同種異體角質形成細胞移植到白色大鼠人工疤痕上的實驗工作

使用細胞潛能的願望和尋求改善疤痕美學外觀的新有效方法的需求導致了試圖研究角質細胞移植到瘢痕表面的可能性的想法。

為了證明使用角質形成細胞，增強疤痕試點工作已在白色的實驗室老鼠，其中創建疤痕表面進行外觀的可能性。疤痕模型大鼠由人為造成治療上回傷口，沿脊柱準備。大鼠切相同的皮革，尺寸2×3厘米的碎片。後操作“模擬瘢痕形成”大鼠2.5個月後，從年輕大鼠2-4天的皮膚進行磨皮手術（去除經由ignioperation瘤胃上層的）和移植同種異體角質形成細胞，分離的出生後。

大鼠表皮細胞的分離和生長在以下技術的細胞學研究所的細胞技術實驗室中進行。

在含有200U / ml慶大霉素的Hanks鹽水溶液中洗滌皮膚，切成面積為0.2-0.5cm ^2的小片。將皮膚立方體在0.5％的disaspase溶液中在37℃的平衡鹽水磷酸鹽緩衝溶液中溫育1小時。然後將碎片轉移至Dulbecco's磷酸鹽緩衝鹽水中，並將表皮與真皮分離。表皮是在0.125％胰蛋白酶溶液，在50轉/分鐘，之後將酶通過加入5％胎牛血清的停止的速度攪拌下溫育10-15分鐘。將所得細胞懸浮液的三分之一是在純的形式用於選擇之一移植疤痕，第二，第三生長在國內生物相容性膜塗層“Polipor”，第三-在培養皿上沒有基板。操作磨皮獲得的瘢痕形成大鼠隨後轉移到它們在乙醚麻醉下，使用燒灼進行epidermotsitov大鼠。

大鼠的第一組在拋光磨皮後，用鹽水洗滌並乾燥表面無菌瘤胃疊加草坪，其上沉積的片（根據細胞學研究所）在每1ml 150萬個細胞的濃度加擾同種異體大鼠epidermotsitov漿料。Batistovye塊適合拋光的疤痕，以便細胞躺在疤痕的表面。繃帶上的粗棉布幾層，其被縫合到疤痕的邊緣的頂部上。

將一部分得到的細胞懸浮液鋪在皮氏培養皿中，在無菌Polypore膜上切成杯狀，另一部分放在沒有膜的培養皿上。培養在由DMEM和F12的混合物組成的FAD培養基中以3:1的比例進行。加入10％胎牛血清，5μg/ ml胰島素（Sigma），0.5μg/ ml半琥珀酸氫化可的松（Sigma）。10μg/ ml表皮生長因子EGF（Institute of Cytology RAS，St.Petersburg）。第二組和第三組7隻大鼠在第一組後6天手術。此時，由培養皿中的角質形成細胞懸浮液形成多層地層，將其移植到大鼠體內。第二組移植了表皮細胞的第三組 - 具有沒有底物的多層。7天后，將播種在Polypore膜上的alogic角質形成細胞（MPALK）的多層層直接培養移植到傷口表面上。以上，為了避免其撕裂，將該膜用多層紗布敷料固定並縫合到大鼠的皮膚上。

移栽角化細胞第三組大鼠之前，生長無基材，產生PAC的從培養皿分散酶處理的底部分離，具有以選擇性地破壞真皮表皮通信的能力。下一個多層儲分散酶的作用破壞了基底細胞層的到培養皿的底部連接，並在較小程度上，它會影響細胞間的通信，這使得它能夠“清除”的整個層。如下進行通過處置來分離多層細胞層。從培養皿混合傳輸介質，所述細胞片用含有抗生素的培養基三次，尤其是 - 慶大霉素（0.2毫克/毫升）。多層層倒入0125％分散酶溶液（«西格瑪»），並放置在其中它們在t =孵育37℃20-30分鐘的孵化器。白色花冠的外觀，圍繞容器的周邊剝離 - 從邊緣和培養皿的底部分離它的過程的開始的指示。分離過程開始後幾分鐘，分散酶倒空溶液2-3次上皮層用平台。上施加表皮層的表面上，切成一定尺寸杯片無菌傷口敷料“利斯色，其被切割分離的分散酶的形成，在杯的底部的進一步脫層用刮刀。使用眼科鑷子與衛生巾的塗層一起層”利斯色“（俄羅斯）脫離了培養皿的底部遠，並仔細轉移到疤痕的準備好的表面。餐巾“利達色”包含在其組成和慶大霉素eksolin（膠原提取物），其在潤濕時的環境在未來保持芽 閃生理鹽水膨脹，並成為現代傷口塗料，由於與結構初濕提供了從外部感染和快速癒合良好的保護。

聚丙烯薄膜和麗塔色餐巾用紗布繃帶分層，縫在大鼠皮膚上以更持久地固定。將每隻大鼠種植在單獨的籠中，以為其維持和移植的角質形成細胞的植入創造最佳條件。繃帶大鼠每天移植的懸架和多層次的水庫epidermotsitov拍攝中性蛋白酶，每日數次，用無菌生理鹽水浸濕，以創造最有利的條件下，細胞移植。考慮到電影“Polypor”不透水，第二組的老鼠沒有滋潤敷料，這是沒有電影移植的優點之一。10天后，繃帶被移除。瘢痕形成的下列細胞移植的臨床圖像無疤痕沒有差異從移植不多，除粉色著色它們（通過磨削術），更剝離。這個事實表明這一點。在IPC傷口覆蓋物消失後立即在瘤胃中未發生變化。

取大鼠活檢材料。

在將大鼠alogic角質形成細胞轉移到白色大鼠的磨碎的瘢痕後1,2,5和9個月後，將材料用於組織學，細胞形態學和電子顯微鏡檢查。作為正常大鼠皮膚和瘢痕的對照樣品在不移植細胞的情況下被攝取。用乙醚麻醉進行大鼠麻醉。

麻醉後，從移植角質形成細胞的標記區域取出直徑為2mm的活檢穿孔器。取瘢痕組織片並置於2.5％戊二醛溶液中以製備用於電子顯微鏡的材料。用於組織學檢查組織的片貫通佈線醇置於10％中性福爾馬林溶液中，然後填充在石蠟中，隨後的超薄切片的切割和在光光學顯微鏡觀察它們。

對照I.正常大鼠皮膚。

為了在IPC移植後的某些時間觀察大鼠正常瘢痕改變皮膚的顯微照片與瘢痕之間的差異，證明了在該研究的所有階段對它們的照片和描述。

正常皮膚的表皮由7-9層細胞組成。中等厚度的角質層。在它由6-8層角質鱗片組成的地方。基底層由具有大光，正常核和幾個核仁的圓柱形細胞代表。清楚地表達細胞和基膜之間的橋粒連接。下，其具有在平行謊言表皮下層以膠原蛋白和彈性纖維，包括細長的成纖維細胞，小血管的柔束細的突起明確限定的基底膜。在更深層次，膠原蛋白和彈性蛋白纖維束位於不同的方向。其中有許多具有相同口徑的薄壁血管，細胞成分（成纖維細胞，肥大細胞，白細胞）。在大量的毛囊，皮脂腺。

對照2. 2個月大的老鼠的疤痕。

臨床圖片。傷痕蒼白的粉紅色，剝落的地方，地殼仍然存在。它們的面積由於降低到膠原纖維的收縮，並成為約3.0-3.5厘米^：。皮膚附件不存在。

顯微照片。表皮是由3-5層細胞，打褶，由圓形的基底細胞中，一行表示鑽形的，1-2行透明角質顆粒與在上層顆粒中，有細胞內水腫的部分。角膜層從非常薄到不均勻變厚。由於疤痕組織的（收縮），瘤胃會折疊。褶皺滲透到乳頭層並產生乳頭的印象。表皮和真皮之間的邊界是直線。基膜無法追踪到處。在表皮下層和較深層 - 血管壁厚而鬆動，許多都是空的，有瘀血現象。在血管周圍 - 一組巨噬細胞，成纖維細胞。巨噬細胞環繞從毛細血管中出來的紅細胞並將它們吞噬。在更膚淺的層次 - 小毛細血管。在表皮下，膠原纖維鬆散。在瘤胃的較深層 - 膠原纖維粗纖維束，其中有許多成纖維細胞。

移植MPAl大鼠大鼠角質形成細胞後一個月大鼠的瘢痕。

臨床圖片。疤痕粉紅色，面積減少，尤其是直徑和平均2.5-3厘米²。頭髮和皮脂腺缺席。

該材料的這些鏡檢，而基本上不相同，從大鼠上的膜和基板傳送MPAlK MPAlK獲得。然而，在技術上，與MPAlK不支持的工作更加困難和費力比襯底上生長MPAlK的時候，所以這個問題對kertainotsitov傷疤，我們作為培養（“基材”）的分層草坪的基礎上移植的進一步研究。

顯微照片。表皮增厚至15-20層，幾乎到中間，角質形成細胞具有狹窄，細長，垂直的形狀和緊湊的排列。基底細胞排列成一條不平坦的線。它們的細胞核很輕，大，圓形，有一個或兩個核仁，這表明它們具有很高的合成和增殖活性。表皮和真皮之間的邊界是直線。棘層發達，由3-5層圓形細胞組成，有2個核仁細胞。

緊接在基膜下 - 密集的膠原纖維束，平行於它們的大量空的血管，更深的膠原蛋白纖維更粗糙，收集在密集的束中。許多大的成纖維細胞，肥大細胞（視野中2-3個），巨噬細胞，白細胞和空管，其壁鬆散，周圍是鬆散的膠原纖維。在一些血管中 - 靜脈，統一元素的排列。在血管周圍 - 成纖維細胞，單個淋巴細胞。皮膚附件不存在。

當角質形成細胞懸液移植到拋光的疤痕時，顯微圖像與前一個不同。在大多數動物中 - 表皮很薄，由5-6層細胞組成。下層由具有圓形不規則形狀的核的不規則多邊形形狀的細胞組成。表皮層的狀況與沒有移植的動物組相似。

在這種情況下，可以說延遲細胞移植的過程，或者以懸浮液形式移植細胞的大量損失。因此，得出的結論是，通過角質形成細胞移植以懸浮液形式修復瘢痕形成是不合適的。

移植MPA1大鼠大鼠角質形成細胞2個月後大鼠的瘢痕形成。

臨床圖片。疤痕看起來很薄，很嫩。在那裡有一個蛻變，規模。

顯微照片。角質層增厚，在某些地方 - 角化過度。表皮變厚，由12-20排細胞組成。表皮和真皮之間的邊界是直線。表皮下精緻的膠原纖維相當緊密。在瘤胃深層，它們被收集成粗糙的大捆。在表皮下層出現新的血管形成。在疤痕組織的較低層 - 許多空的血管，位於平行於表皮表面的表面。大的成纖維細胞均勻地分佈在瘤胃的厚度，有巨大的，多方面的，巨噬細胞。

移植大鼠精細胞MP後5個月的大鼠瘢痕。

臨床圖片。瘢痕外表光滑，光滑，無剝離，上有傷痕，這表明在毛囊的瘤胃和腫瘤邊緣向內生長毛囊的周邊其更大的密度的單發。疤痕面積繼續減少。

顯微照片。表層仍然很厚（15-20層，有時甚至達到30層）上層充滿了角質層細胞顆粒。基膜清晰可見。在她的膠原纖維下面鬆散。在較低層 - 膠原蛋白更強大，緊密包裝。在膠原束中有許多毛細血管。在上層，空的血管數量減少。表皮和真皮略帶波浪。疤痕組織中有深表皮生長物。膠原纖維中可見新形成的血管。出現單發毛囊和皮脂腺。

在移植IPA大鼠表皮細胞9個月後大鼠的瘢痕。

臨床圖片。相比較早時期的傷疤要小得多，大約1.5-2.0厘米的面積平均²。疤痕不均勻地覆蓋著稀疏的頭髮，尤其是在周圍。小的小板縮放保留。

顯微照片。

表皮變得更細，代表6-8排細胞，讓人想起大鼠正常皮膚的表皮結構，只有細胞密度減少1毫米。更高，他們更小。基底層由圓柱形的小細胞組成。基膜清晰可見，半橋粒清晰可見。注意到表皮下層中存在表皮生長物。乳頭層沿疤痕的整個長度表達。這些事實表明，在這段時間內，移植的角質形成細胞的粘附力已經顯著地強於瘤胃的下層組織。因此，在IPC移植9個月後護理MALC移植患者的疤痕可能是傳統的。表皮下的膠原纖維比深層更纖細。有許多船隻，特別是表面上位於。在較大的容器中，牆壁變厚。大量的毛囊和皮脂腺。微觀圖案類似於真皮組織。

實驗工作的結果和討論。

期間對大鼠的人工皮膚疤痕術後磨皮，在各種formah-纏繞表面上的移植角質形成細胞，如在麻布和層狀形成懸浮液這項工作沒有基板。完成該工作以獲得關於移植的同種異體角質形成細胞對瘢痕的作用的形態學數據，以及確定最佳的移植變體。

發現所有三種移植方法都是真實的，但是在沒有底物的情況下移植IPAA是非常費力的程序，在此期間IPAC會受到損傷，這會影響移植的結果。此外，這種移植方法不包括大面積的工作。

移植角質形成細胞懸浮液 - 被顯著更經濟的方法不需要使用無菌麻紗預型件長培養細胞，並在本實施例中的簡單，接觸，其尺寸對應於瘢痕形成的值。與傷口塗層上的MIC相比，在細胞懸液移植約一個月的過程中治療效果的滯後不是治療持續時間的重要時刻，在多個月內計算。眾所周知，在IPC的燒傷移植過程中，皮膚結構狀態的改變逐漸發生並持續數年。將角質形成細胞培養物移植到傷口覆蓋物上是最方便和有前景的方法，然而，它也昂貴得多。此外，今天還需要尋找更複雜的塗層，這些塗層必須是塑料，吸濕性，具有抑菌或殺菌特性，並且對細胞具有生物學中性。電影“Polipor” - 國產電影的傷口覆蓋的中間版本，儘管有一些不足之處，讓我們來研究疤痕實驗角質細胞移植大鼠和得出關於這個方向的吸引力疤痕的有效性的結論。

誰在燒焦的IPC傷口進行移植的作者指出，在第一週的消毒傷口多層水庫角質細胞移植後，表皮增厚和分層。表皮的所有層都明確界定。有趣的是，移植中的細胞層數比皮膚活檢標本中的細胞層數多10-30％。作者指出，在MPA移植後第5天，基底膜和半橋粒 - 已經在第三天出現角質形成細胞顆粒。

J.Rives等（L994），Paramonov BA（1996）; NM Kuznetsov等。（1998）發現，在移植後的BMD患者polnosloynymi皮膚缺損燒傷後早期期間，真皮和表皮之間的通信是非常弱的，並且是直線，乳頭層不存在。由第二月底開始淺乳頭和皮膚附屬器，通信真皮和表皮的形成變得更強。傷口文獻數據govoryato移植異體角質形成細胞燒傷病人是一個很有前途的方法。儘管同種異體角質形成細胞的排斥反應發生在週期提交的不同的作者從10天到3個月的事實，但是，它們在創傷面治愈的作用，釋放的生長因子和機械地關閉所述缺陷。據信，MPAlK具有降低的抗原性，因為當在體外培養失去朗格漢斯細胞，使他們能夠在接受者體內長時間存在。另外，從健康的年輕人的皮膚衍生異體文化比患者創傷後的自體培養更大的生物潛力。

我們研究的主要目標是找出同種異體角質形成細胞是否能夠在疤痕上存活，以及在這種生物活性“傷口包衣”的影響下瘢痕組織的變化。如果得到肯定的結果，在這個康復醫學領域制定出最有效和最少的勞動密集型技術。

我們在很多方面獲得的數據結果與關於異體角質形成細胞轉移至燒傷後人表皮發生形態學變化的文獻數據類似。但是就移植的形態基質和技術而言，存在顯著差異。所以。基底膜和真皮 - 表皮連接（半脫顆粒，乳頭）的形成過程發生在角質細胞移植到傷口表面而沒有瘢痕改變的晚些時候。這似乎是由於與真皮或肌肉筋膜相比，瘤胃組織的營養不良。疤痕，特別是老年人，是一種結締組織密度很小的血管，燒傷傷口的底部是富含血管的肉芽組織。因此，明顯的是角質形成細胞發生移植和植入的條件完全不同。細胞移植區越是血管化，處理它們就越容易。從這個假設得出的結論是，喜歡和年輕的疤痕一起工作，其中結締組織仍然夠松並富含血管。

作為這項實驗工作的結果，事實證明：

1. 將MALK移植到疤痕是可能的。 
2. 最佳的移植方法是將角質形成細胞移植到創面上。
3. 應使用舒曼激光或切割器，使用手術磨皮研磨疤痕表面。
4. 在MPALK的影響下，瘤胃地表迅速上皮化。
5. 更好的血管化瘢痕組織，即疤痕越年輕，角質細胞移植的結果就越好。
6. 在移植的角質形成細胞的影響下，瘢痕組織逐漸轉化並變成類似皮膚的（具有皮膚附屬物的更易碎的瘢痕組織）。
7. 疤痕組織的逐漸鬆動始於表皮下層。改善其血管化作用，瘤胃上部和下部的膠原纖維束比沒有移植細胞的瘢痕組織更易碎。有毛囊和皮脂腺。其結構中的表皮在通過肥大階段後正接近正常皮膚的表皮。
8. 所觀察到的變化與分泌的生長因子的角質形成細胞，細胞因子，改善疤痕組織的營養性從在較松的剛性的纖維組織，這導致疤痕的改善有助於其轉化。

因此，基於這項研究，可以得出結論：移植的角質形成細胞對瘢痕組織的有益作用，這對於各種類型的疤痕患者的康復可能具有實際重要性。

這項對老鼠的工作也允許制定要求。對角質形成細胞生長的傷口覆蓋物。

傷口覆蓋物應該是：

• 與細胞生物相容，
• 透氣，
• 有一個有彈性的造型基地，
• 親水，
• 因為藥用添加劑含有抗菌藥物，抗氧化劑對培養細胞無毒。

生物技術治療疤痕的臨床結果。

早些時候，N.卡弗等人。（1993）發現封閉敷料最適合附著於角質形成細胞的傷口和存活，但不允許形成分層（成熟）表皮。為了形成分層的表皮，空氣環境是必要的。因此，在貼附多層層之後，在7-10之後建議進行閉塞性傷口覆蓋以在幹繃帶或水溶性軟膏下移除和傳導傷口。我們可以說，細胞生長的“基質”的質量和性質對於細胞材料移植的有效性以及醫生的工作結果非常重要。但是，儘管提出的選擇（人造皮革，羧甲基纖維素的非織造織物，纖維蛋白塗層，半透性聚氨酯膜）豐富，但目前還沒有理想的傷口覆蓋物。在這個問題上不是不重要的時刻是“底物”（特殊的傷口塗層）的成本，因為它們的高成本增加了生物技術處理的總成本。

電池技術迄今的有效性證明，但不幸的是，這些技術是非常昂貴的，尤其是在沒有工業生產細胞組合物的國家。然而，像美國這樣的國家早已建立了一個生產用於移植燒傷的細胞材料的工業。特別地，該公司BioSurface技術公司，1989年以來，提出了的角質形成細胞，其已經用1厘米用於240患者的治療在79個國家的世界（R.Odessey，1992）圍繞的37000層壓層²的細胞培養成本約7-8 $美元。

治療各種疾病和皮膚問題的技術有許多不同之處，但任何細胞治療的核心都是生產優質細胞材料及其移植。

該過程由以下步驟組成：

• 從受影響的（或來自捐贈者）選擇皮膚，
• 運輸皮瓣到生物技術中心，
• 基底層細胞的分離及其增殖，
• 積聚多層角質形成細胞層（IPC）。
• 細胞培養的移植。

移植多層角質形成細胞層的治療中的主要問題是細胞移植的所有階段都需要活細胞。用於分離自體或同種異體細胞的皮片應該盡可能薄，因為在這種情況下，它們使用機械和酶促方法更容易分離並獲得用於生長的活細胞的懸浮液。它們可以通過切斷皮膚組織或使用眼皮，包皮，肩部內表面來獲得。鑑於細胞對鹵素（氯，碘），過氧化氫敏感，它們不能用於處理皮膚時的物質。

來自皮膚移植物的細胞的定量和定性產量及其培養的有效性還取決於供體的健康狀況和年齡。此外，皮膚活檢標本應盡快送達實驗室，並在適當條件下（環境，溫度）送至經認證和認證的實驗室。

加入10％牛血清的Eagle培養基或培養基199，補充有5％胎牛血清和抗生素的DMEM培養基可用於儲存和運輸皮瓣。

在細胞學實驗室中，皮膚活組織檢查首先被機械地分成小塊，然後在酶的幫助下進行皮膚碎片的加工：胰蛋白酶，膠原酶，dyspase等。

在酶的作用下，發生橋粒破壞並且角質形成細胞作為分開的細胞或由不同數目的細胞組成的聚集體釋放到培養基中。為了培養，僅使用基底角質形成細胞，其在含有5％CO的培養器中的特殊培養基上生長，在培養皿或小瓶中在t = 37℃下培養 在48小時內，觀察到角質形成細胞集落的形成，其逐漸匯聚成單層。獲得足夠數量的細胞後，將所得懸浮液塗佈在為此目的製備的傷口覆蓋物上並置於培養皿中。從懸浮液中，首先形成單層，然後形成多層角質形成細胞。示意性地，角質形成細胞培養過程的階段如圖1所示。12（33.43.54.65）。

適合移植的多層角質形成細胞形成通常需要7-10天。有時這段時間更長，這取決於源材料的質量（年齡，供體健康狀況，材料的正確性，所用介質的質量等）。如果多層過度生長，那麼在其表面可能存在細胞凋亡現像不適合移植。培養皿通過多層角質形成細胞（IPC）在傷口覆蓋物中生長，以不低於+ 15℃的溫度在特殊容器中遞送至臨床。

改進的格林方法生長IPC

在我們作為傷口塗層的工作中，我們使用了多層cambric，放棄了我們開始用老鼠進行實驗的多孔膜。因此，多層角質化細胞層是由我們在預脂肪和無菌巴氏培養基上培養的，儘管它也不是最佳的傷口覆蓋物。

對志願者進行臨床研究，遵守必要的道德準則：簽署條約和知情同意書。

1. 應用自身（自體）培養並從銀行細胞（同種異體）角質形成細胞中取出。
2. 自己的角質形成細胞是從患者肩部內側切下的一塊皮膚獲得的。
3. 在熱耦合，轉盤和鉺激光器的幫助下進行瘢痕的磨削。
4. 患有營養正常，營養不良和肥厚性瘢痕的患者群被採集。

應用細胞技術改善皮膚瘢痕類型的技術過程包括以下階段：

1. 患者的選擇。
2. 解釋治療的本質，獲得預期結果的時間，簽署條約和知情同意。
3. 手術前2〜3週預約患者1t。每天3次，一次1k。每天3次。
4. 從肩部的內表面取一塊長2.0cm，寬0.7-1.0cm的皮膚，幾乎在腋下區域的底部，獲得自體角質形成細胞。
5. 在病人自己選擇的角質形成細胞的故障的情況下，由於獲得所述肩部的內表面上的線性瘢痕的可能性，細胞材料，從細胞（角質形成細胞的同種異體）的銀行採取。
6. 分離角質形成細胞並在經過這類工作認證的實驗室條件下生長。
7. 在接受足夠移植的IPC之後，在診所對傷口進行了一天的手術，將材料放入培養皿中的特殊容器中。
8. 磨皮操作來執行止血瘤胃地面用無菌鹽水洗滌，乾燥，之後將其在無菌IPC麻紗移植“細胞下來”。也就是說，MIC上部的細胞較低，靠近拋光錶面。
9. 無菌薄膜疊加在頂部，用彈性繃帶或Omnifix彈性創可貼固定在皮膚上。也可以使用含有矽氧烷的不重要的傷口塗層，例如Mepitel，Mepiform，矽凝膠板來代替膜。

5-7天后，除去薄膜或矽樹脂塗層。此時，所有角質形成細胞必須爬到拋光的疤痕上並附著在其表面上。

10. 在薄膜和矽樹脂塗層下形成的潮濕環境正在為此做出積極貢獻。從這一點上留在疤痕上的浸禮師可以用curiose或殼聚醣凝膠浸漬。因此，在第二天創建一個緻密的地殼，為了病人的方便，最好用彈性透氣石膏（例如Omnifix）固定。透氣的地殼允許新形成的表皮分化並變成成熟的表皮。

根據瘢痕類型和研磨深度，敷料在8-10天后被拒絕。此時的表皮比正常皮膚多30-40％的細胞層。基膜沒有形成。增厚的表皮的角質形成細胞將大量生物活性分子釋放到瘢痕組織中。

生物技術治療瘢痕的成功很大程度上取決於術後患者的治療方式。細胞培養是一種“嫩”類的傷口覆蓋物，並且在移植後的早期階段，BMD可以容易地從下面的組織中分離。因此，建議患者在手術後照顧疤痕。8-9個月，不要揉搓和輕鬆使用冷開水，以避免扯下一層薄薄的新生表皮，這種表皮不會與下面的組織緊密接觸。

注。

手術前和磨皮使用鹵化氧化劑和防腐劑（yodopiron，sulyodopiron，iodinol，yodinat，氯己定，過氧化氫）的過程中是移栽kletok-由於它們的細胞毒性效應絕對禁忌之前允許的。對細胞有毒也是亞甲藍。燦爛的綠色。

為了避免感染，特別是在使用肥厚性瘢痕時，可以用硫酸新黴素，多粘菌素或慶大霉素治療手術區域。它們不會對角質形成細胞產生細胞毒性作用。

作為這種治療的結果，實現了三重效果。

1. 對齊瘤胃表面。
2. 在一個新的表皮上創建一個層，厚度正常。
3. 由於細胞因子，生長因子和其他生物活性分子的作用將瘢痕組織轉化為類皮樣，由移植細胞分泌並由它們刺激角質形成細胞，成纖維細胞和巨噬細胞。

由於MPC中黑素細胞的存在，疤痕變得不那麼顯著，彈性更大，毛孔出現，蓬鬆的頭髮，色素沉著可以恢復。

然而，疤痕中的所有這些積極時刻並不是立即出現的。在這方面，有必要警告患者。疤痕組織進入真皮層的過程很慢，預計這種治療的最佳結果不會早於10-14個月。拋光後立即拋光的拋光錶面具有明顯的多色，磨光過程越亮。當用鉺激光器研磨營養正常的疤痕時，對皮膚損傷最小。疤痕和周圍皮膚的顏色在3至8週內恢復。儘管採取了這樣的預防措施，但有時會出現術後色素沉著過度，可以獨立持續數月。

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